Cuantificación e identificación de compuestos extraidos por maceración de semillas de un árbol silvestre

Authors

  • E. Juárez-Madrazo Universidad Juárez Autónoma de Tabasco image/svg+xml
  • Pantoja-Castro M. A. Pantoja-Castro M. A. Universidad Juárez Autónoma de Tabasco image/svg+xml
  • García-Gómez J.O García-Gómez J.O Universidad Juárez Autónoma de Tabasco image/svg+xml
  • Vázquez-Guerrero A. Vázquez-Guerrero A. Universidad Juárez Autónoma de Tabasco image/svg+xml
  • Del Ángel-Meraz E Del Ángel-Meraz E Universidad Juárez Autónoma de Tabasco image/svg+xml
  • Rojas-Blanco L Rojas-Blanco L Universidad Juárez Autónoma de Tabasco image/svg+xml

DOI:

https://doi.org/10.19136/jeeos.a9n3.6581

Keywords:

Gmelina arborea, phytochemical profile, seed

Abstract

En este trabajo se presenta el análisis preliminar de espectroscopía ultravioleta visible, espectroscopía de infrarrojo (FTIR) y cromatografía de gases  acoplada a masas (GC-MS), a extractos obtenidos del proceso de extracción por maceración de las semillas del árbol silvestre Gmelina arbórea. A partir de los resultados de ultravioleta e infrarrojo se manifiesta la evidencia de grupos funcionales orgánicos y presencia de ácidos decadenas cortas, sin evidencia de fenoles o polifenoles de cadenas cortas, además mediante CG-MS se logró identificar que el ácido erúcico se encuentra en un 50.2%  y se tiene un 23.04% de ácido 9,12 octadecadienoico principalmente cuando se utiliza agua, etanol y acetona como solvente a 80 °C. mediante este análisis se demostró que el tamaño de partícula influye en la composición de los extractos, con partículas más finas que permiten la extracción de un mayor número de compuestos, aunque con partículas más grandes se obtiene una concentración 
más alta de ciertos compuestos. Además, se evaluó el efecto de diferentes solventes en la extracción, encontrando que el agua resultó ser el más eficiente para la extracción de ácido  

References

[1] Mannino, G., Perrone, A., Campobenedetto, C., Schittone, A., Margherita Bertea, C.; Gentile, C. (2020). Phytochemical profile and antioxidative properties of plinia trunciflora fruits: a new source of nutraceuticals. Journal of Food Chemistry, 307, 125515.

[2] Tzima K, Brunton NP, Rai DK. (2018). Qualitative and quantitative analysis of polyphenols in lamiaceae plants-a review. Journal of Plants. 7(2) 1-25.

[3] Manousi, N., Sarakatsianos, I., Samanidou, V. (2019). Extraction techniques of phenolic compounds and other bioactive compounds from 90 Registro ISSN 2448-8186 DOI:10.19136/Jeeos.a9n3.6581 Juárez-Madrazo E.1 Vol.9 Num 3: 2025 pág. 79-92 medicinal and aromatic plants. In Engineering tools in the beverage industry (283-314). Woodhead Publishing.

[4] Mannino, G., Chinigò, G., Serio, G., Genova, T., Gentile, C., Munaron, L., Bertea, C. M. (2021). Proanthocyanidins and where to find them: a meta-analytic approach to investigate their chemistry, biosynthesis, distribution, and effect on human health. Journal of Antioxidants, 10(8), 1229-1283.

[5] Muñoz, W., Chávez, W., Pabón, L. C., Rendón, M. R., Patricia C., M., Otálvaro-Álvarez, A. M. (2015). Extracción de compuestos fenólicos

con actividad antioxidante a partir de Champa (Campomanesia lineatifolia). Revista CENIC. Ciencias Químicas, 46, 38-46.

[6] López F., O., Domínguez, R., Pateiro, M., Munekata, P. E. S., Rocchetti, G., Lorenzo, J. M. (2020). Determination of polyphenols using liquid

chromatography–tandem mass spectrometry technique (LC–MS/MS): a review. Journal of Antioxidants, 9(6), 479.

[7] Trujillo, A. S. D., Insuasti, J. A. P.

(2018). Influencia del tamaño de partícula, la agitación y el tiempo en la extracción de sustancias bioactivas de filaseta ostra (Pleurotus ostreatus). Revista Biorrefinería 1(3),26-36.

[8] Soto G., M., Rosales C., M. (2016). Efecto del solvente y de la relación masa/solvente, sobre la extracción de compuestos fenólicos y la capacidad antioxidante de extractos de corteza de Pinus durangensis y Quercus sideroxyla. Maderas. Ciencia y Tecnología, 18(4), 701-714.

[9] Gómez M., E., Rosales C., N., León G., M.E., Madrid, Y. (2019). Determination of phenolic compounds in residual brewing yeast using matrix solid-phasedispersion extraction assisted by titanium dioxide nanoparticles. Journal of Chromatography A, 1601, 255-265.

[10] Li, W., Zhang, X., Chen, R., Li, Y., Miao, J., Liu, G., Lan, Y., Chen, Y., Cao, Y. (2020) HPLC fingerprint analysis of phyllanthus emblica ethanol extract and their antioxidant andanti-inflammatory properties. Journal of Ethnopharmacol. 2254, 112740.

[11] Santos, I. E. M., Fiallo, V. R. F. (2002). Plantas ornamentales en Cuba I. Lámiales. Revista del Jardín Botánico Nacional, 263-284.

[12] Xuening C., Weiqing L., Jing X., (2024). Natural phenolic compounds: antimicrobial properties, antimicrobial mechanisms, and potential utilization in the preservation of aquatic products. Journal of Food Chemistry, 440, 138198.

[13] Jiayi W., Shufang Z., Futai L., Shuo W., Qiliang D., (2024). Polyphenols functionalized MOF encapsulated BPQDs for synergistic photothermal/photodynamic antibacterial properties and multifunctional food preservation. Journal of Food Chemistry, 451, 139451.

[14] Azmir, J., Zaidul, I. S. M., Rahman, M. M., Sharif, K. M., Mohamed, A., Sahena, F., Omar, A. K. M. (2013). Techniques for extraction of bioactive compounds from plant materials: A review. Journal of Food Engineering, 117(4), 426-436.

[15] Boarino A., Klok H. A. (2023). Opportunities and challenges for lignin valorization in food packaging, antimicrobial, and agriculturaapplications. H. Journal of Biomacromolecules, 24, 3,1065-1077.

[16] Shikai Z., Xinxin C., Wenjing Y., Quanbin F., Feng S., Peng W., Yijing L., Fen W., Houshen L., Shiyun A., (2024). Converting fruit peels into

biodegradable, recyclable and antimicrobial eco-friendly bioplastics for perishable fruit preservation, Journal of Bioresource Technology, 406, 131074.

[17] Jha, A. K., Sit, N. (2022). Extraction of bioactive compounds from plant materials using combination of various novel methods: A review. Trends in Journal of Food Science and Technology, 119, 579-591.

[18] Ayag, O. A., Padonat, K. L., Minguita, K. E. S., Vergara,J. A. O., Jusoy, J. C., Cornelio S. C. (2025). Disease spectral identification and

analysis on the bark of Gmelina (Gmelina arborea Roxb). Journal Sylva Lestari. 13 (1) 60-74.

[19] Leufen, G., Noga, G., and Hunsche, M. (2014). Proximal sensing of plantpathogen interactions in spring barley with three fluorescence

techniques. Sensors 14(6): 11135–11152.

[20] Domínguez-Pérez, L. A., LagunesGálvez, L. M., Barajas-Fernández, J., Olán-Acosta, M. A., García-Alamilla,R., & García-Alamilla, P. (2019).

Caracterización vibracional de grupos funcionales en granos de cacao durante el tostado usando espectroscopía de infrarrojo por transformada de Fourier. Acta Universitaria 29, e2172.

[21] Sócrates, G. (2004). Infrared and raman characteristic group frequencies: tables and charts. John Wiley & Sons.

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Published

2025-12-17

Issue

Section

ARTÍCULO CIENTÍFICO

How to Cite

Juárez-Madrazo , E., Pantoja-Castro M. A., P.-C. M. A., García-Gómez J.O, G.-G. J., Vázquez-Guerrero A., V.-G. A., Del Ángel-Meraz E, D. Ángel-M. E., & Rojas-Blanco L, R.-B. L. (2025). Cuantificación e identificación de compuestos extraidos por maceración de semillas de un árbol silvestre. Journal of Energy, Engineering Optimization and Sustainability, 9(3), 79-92. https://doi.org/10.19136/jeeos.a9n3.6581